Главная страница
Навигация по странице:

  • Посттрансфузионный гепатит

  • 15.2.3. Организация донорства в профилактике посттрансфузионных гепатитов

  • Таблица 149 Анализ количества донаций крови в странах с разным ИРЧ

  • Таблица 150

  • 15.2.4. Обследование доноров в профилактике посттрансфузионных гепатитов 15.2.4.1. Отбор проб крови для лабораторных исследований, маркировка, доставка

  • 15.2.4.2. Лабораторное исследование маркеров вирусных гепатитов

  • Общие требования к обследованию донорской крови.

  • Издательский дом Питер


    Скачать 5.79 Mb.
    НазваниеИздательский дом Питер
    АнкорZhiburt_E_B_Transfuziologia.doc
    Дата31.01.2017
    Размер5.79 Mb.
    Формат файлаdoc
    Имя файлаZhiburt_E_B_Transfuziologia.doc
    ТипУчебник
    #1519
    страница67 из 77
    1   ...   63   64   65   66   67   68   69   70   ...   77

    Посттрансфузионный гепатит D (ПТГD) — риск возникновения забо­левания значительно ниже, чем при ПТГВ и ПТГС. Исключение крови с на­личием HBsAg приводит к устранению образцов, в которых имеется вирус гепатита D. Вероятность заражения ПТГО при переливании крови, в кото­рой не обнаружен HBsAg, ничтожна.

    Посттрансфузионный гепатит, связанный с цитомегаловирусом (ЦМВ), является одним из проявлений посттрансфузионной ЦМВ-инфекции, доля которой среди гемотрансмиссивных инфекций составляет несколько процен­тов и резко увеличивается среди иммунокомпрометированных реципиентов. Как и другие герпесвирусы, ЦМВ обладает способностью персистировать в тканях и лейкоцитах в течение ряда лет после первичного инфицирования. Не содержащая антител к вирусу кровь здорового донора не несет в себе риска передачи инфекции. Лишь незначительная доля донорской крови с анти-ЦМВ действительно передает инфекцию. Однако в настоящее время весьма затруднительно отделить потенциально инфицирующие серопозитив-ные дозы донорской крови от неинфицирующих, но также содержащих анти-ЦМВ. Арбитражным методом выявления ЦМВ в крови является детекция его

    654 Глава 15. Гемотрансмиссивные инфекции и их профилактика

    ДНК методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) (подробнее см. разде­лы 15.3.3и 15.4). У лиц с адекватным иммунным ответом эти вирусы вызы­вают гепатит редко и в легкой форме. У реципиентов гемотрансфузионных сред с расстройством, подавлением клеточного иммунитета присоединение ЦМВ-инфекции ведет к развитию тяжелых висцеральных поражений, в частности гепатита, часто со смертельным исходом. Поэтому при заготовке до­норской крови (компонентов), предназначенной для трансфузии иммуноком-прометированным реципиентам, необходимо отбирать анти-ЦМВ-отрицатель-ных доноров.

    Известно, что часть больных, перенесших явно посттрансфузионный гепа­тит, остается серонегативной по отношению ко всем маркерам известных ПТГ. Однако четкого представления о существовании посттрансфузионных гепа­титов F, G, упоминаемых в научной литературе, в настоящее время не сфор­мировано (см. также раздел 15.3.5.1. и 15.3.5.3.).

    15.2.2. Закономерности эпидемиологии посттрансфузионных вирусных гепатитов

    Проблемы контаминации вирусами гепатитов в трансфузиологической практике следует разделить на две группы: организационного и производ­ственного характера.

    К организационным дефектам относятся:

    — недостаточный учет эпидемической обстановки в регионе, где плани­руется заготовка донорской крови;

    недооценка значимости медицинского анамнеза;

    — привлечение к донорству лиц, имеющих противопоказания к кровода-че (см. главу 4);

    — привлечение к донорству лиц, относящихся к группам риска;

    — недостаточная подготовка персонала;

    — дефекты в организации работы службы крови, в том числе — в орга­низации лабораторных исследований;

    — недостаточно четкое взаимодействие станций (отделений) переливания крови и учреждений, осуществляющих лабораторные исследования.

    Производственные дефекты возможны на всех этапах заготовки и лабо­раторной апробации крови.

    При обследовании доноров:

    — несоблюдение правил отбора доноров;

    — нарушение правил взятия крови на исследование из пальца, вены (по­вторное использование инструментов и материалов одноразового использо­вания, попадание крови на руки персонала);

    — использование некачественно обработанных планшетов, капилляров, пробирок и/или других изделий многократного применения.

    Посттрансфузионные гепатиты__________________________655

    При взятии и фракционировании крови:

    — нарушение правил венепункции, ведущее к попаданию крови донора на руки эксфузиониста;

    — нарушение требований асептики при соединении двух и более поли­мерных контейнеров для компонентов крови, гемоконтейнера и бутылки с консервантом или отмывающим раствором;

    использование в работе полимерных контейнеров, имеющих микропо­вреждение и как следствие — разрыв (бой) гемоконтейнеров (бутылок) при центрифугировании крови;

    — применение одного и того же инструмента (ножницы, скальпель) для разрезания соединительных трубок контейнеров с гемокомпонентами, герме­тизированных с помощью колец или узлов, у двух и более доноров;

    — попадание донорской крови на руки персонала, выполняющего опера­ции по ее заготовке и фракционированию.

    Мероприятия по минимизации потенциального риска гемотрансмиссив-ных инфекций основаны на нескольких положениях.

    За соблюдение мер безопасности на соответствующих участках работы отвечают все сотрудники, что обеспечивается прежде всего постоянным повы­шением профессиональной подготовки персонала и улучшением техническо­го оснащения.

    Учитывая выявление новых инфекционных агентов и развитие медицин­ских технологий, следует периодически проводить переоценку адекватности мер безопасности.

    Каждый образец крови следует расценивать как возможно инфицирован­ный. Особые меры безопасности могут потребоваться для материалов с высо­ким риском инфицирования (положительные контрольные образцы; кровь и ее компоненты, содержащие маркеры вирусов гепатитов, ВИЧ и т. д.).

    При загрязнении кровью оборудования кроме действий, указанных в разделе 15.2.5, могут потребоваться дополнительные мероприятия в соответ­ствии с инструкцией производителя.

    Руководитель медицинского учреждения обязан:

    — постоянно совершенствовать общую организацию работы на основе улучшения технического оснащения и профессиональной подготовки персо­нала;

    — обеспечить безопасность на всех рабочих местах, выдачу специальной одежды, перчаток и т. д.;

    — проводить специальную подготовку сотрудников по выполнению мер безопасности;

    — контролировать соблюдение техники безопасности на всех рабочих местах;

    — предусмотреть возможность профилактической вакцинации против гепатита В всех сотрудников.

    656__________Глава 15. Гемотрансмиссивные инфекции и их профилактика

    15.2.3. Организация донорства в профилактике посттрансфузионных гепатитов

    Возрастает роль специалистов станций и отделений переливания крови по заблаговременному отбору доноров, а при необходимости — проведению предварительного исследования крови на маркеры вирусных гепатитов. Та­кой подход к донорству невозможен без активного привлечения к сотрудни­честву врачей других лечебно-профилактических учреждений региона, в ко­тором планируется заготовка крови. Исключение из списка потенциальных доноров лиц, имеющих противопоказания к донорству, а также относящихся к группам риска, составляет главную цель такого сотрудничества, позволяет уменьшить количество бракуемой крови и, следовательно, является экономи­чески целесообразным.

    Противопоказания к донорству рассмотрены в разделе 4.2.4.

    На стадии врачебного осмотра непосредственно перед кроводачей специ­алист станции (отделения) переливания крови решает те же задачи: выявле­ние и отстранение от донорства лиц, имеющих противопоказания. Весьма полезным может быть анкетирование и/или предварительное обследование доноров.

    Одновременно донору разъясняется назначение забираемой у него крови и необходимость ее уничтожения в случае выявления маркеров гемотрансмис-сивных инфекций.

    Важнейшими направлениями в профилактике посттрансфузионного ге­патита являются:

    — развитие аутодонорства, применение реинфузии крови (см. главу 11);

    — использование кровезаменителей, стимуляторов различных звеньев гемопоэза (см. главу 12).

    Обследование аутодоноров проводится на станции переливания крови в объеме, предусмотренном для доноров аллогенной крови. Больные-аутодоноры относятся к категории лиц с повышенным потенциальным риском инфици-рования. Венепункция и заготовка крови должны выполняться в таком слу­чае вне донорской операционной либо в отдельной зоне, либо в отдельное время. Заготовленные аутокровь и компоненты хранятся отдельно от донор­ских гемотрансфузионных сред.

    Большое внимание безопасности донорской крови уделяет Всемирная организация здравоохранения. База данных ВОЗ по этой проблеме включа­ет 167 стран.

    Интересен анализ количества донаций в 1997-1999 гг. в странах с раз­ным уровнем Индекса развития человека (ИРЧ, Human Development Index) — критерия, учитывающего величину ожидаемой продолжительнос­ти жизни, уровень образования и уровень доходов. По этому показателю страны разделяются на три группы: с низким, средним или высоким ИРЧ.


    657

    Посттрансфузионные гепатиты


    Всего в мире ежегодно осуществляется 75 млн кроводач. Из них лишь 40 % (30 млн доз) выполняется в странах с низким и средним ИРЧ (табл. 149). Частота донаций на 1000 жителей в странах с высоким ИРЧ в 18 раз выще аналогичного показателя в странах с низким ИРЧ.

    В странах с высоким ИРЧ (с позиций ВОЗ) очевидно, что наиболее бе­зопасна в инфекционном отношении кровь добровольных доноров, регуляр­но сдающих ее по гуманным соображениям. В ряде развитых стран матери­альная стимуляция донорства запрещена (табл. 150).

    В условиях дефицита крови и ее компонентов неизбежно практикуется привлекать к донорству родственников и друзей больных, нуждающихся в гемотрансфузии. Кровь этой категории доноров менее безопасна по двум причинам:

    — доноры-родственники могут скрывать наличие противопоказаний;

    — так называемые «друзья» могут получать скрытое вознаграждение за кроводачу.

    Считается, что получение вознаграждения стимулирует привлечение к донорству лиц с высоким риском гемотрансмиссивных инфекций. Соответ­ственно кровь платных доноров наименее безопасна.

    Следует отметить, что более 20 % (13 млн доз ежегодно) кроводач в мире вообще не обследуется на маркеры гемотрансмиссивных инфекций. Таким образом, 80 % населения Земли получают лишь 20 % безопасной крови.

    Таблица 149 Анализ количества донаций крови в странах с разным ИРЧ

    Показатель


    Низкий ИРЧ


    Средний ИРЧ


    Высокий ИРЧ


    Количество донаций


    (млн доз)


    1,3


    28,9


    44,9


    (%)


    1,7


    38,5


    59,8


    Количество кроводач на 1000 человек


    (среднее)


    2


    10


    40


    (колебания)


    0,3-5,3


    1,7-50,3


    10,4-74,0


    Таблица 150

    Анализ количества различных категорий донаций крови в странах с

    разным ИРЧ

    Тип донации


    Низкий ИРЧ


    Средний ИРЧ


    Высокий ИРЧ


    млн


    %


    млн


    %


    млн


    %


    Добровольные безвозмездные


    0,4


    31


    11,6


    40


    43,9


    98,0


    Родственник / заместительная


    0,8


    61


    11,7


    41


    1,0


    2,0


    Платные


    0,1


    8


    5,6


    19


    0,03


    <0,1


    Всего


    1,3


    100


    28,9


    100


    44,9


    100


    658 Глава 15. Гемотрансмиссивные инфекции и их профилактика

    В современной России тезис о том, что кровь безвозмездных доноров бе­зопаснее в инфекционном отношении, чем оплаченная кровь кадровых доно­ров, не всегда верен.

    Частота отводов доноров по результатам осмотра терапевта и лаборатор­ного обследования: кадровых — менее 1 %, резерва — более 10 %.

    В напряженной эпидемиологической ситуации по гемотрансмиссивным инфекциям частное обследование донора обеспечивает более высокую степень безопасности гемотрансфузионных сред, приготовленных из его крови. Кад­ровые доноры, как правило, обследуются более 5 раз в год. В учреждениях, ориентированных преимущественно на кадровое донорство, частота обследо­вания достигает 8-11 и более раз ежегодно. Доноры резерва обследуются менее 2 раз в год.

    Таким образом, в России в современных условиях значительно большей инфекционной безопасностью обладает кровь кадровых доноров, прошедших тщательный медицинский отбор здоровых людей, регулярно обследуемых, заинтересованных в сохранении своего здоровья и в получении от государ­ства компенсации за предоставляемые донорские услуги. Гемокомпонентная терапия для отдельных групп больных (дети; больные, нуждающиеся в мно­гократных трансфузиях) должна состоять исключительно из гемокомпонен-тов, приготовленных из крови кадровых доноров.

    15.2.4. Обследование доноров в профилактике посттрансфузионных гепатитов

    15.2.4.1. Отбор проб крови для лабораторных исследований, маркировка, доставка

    Для предупреждения заражения гепатитом доноров и персонала станции (отделения, нештатного пункта) переливания крови необходимо:

    — использовать индивидуальные стерильные комплекты лабораторных инструментов и материалов для каждого донора;

    — имеющиеся на коже рук персонала повреждения (ранки) заклеить лейкопластырем, работать только в резиновых перчатках, а при угрозе раз­брызгивания крови — в масках;

    — обрабатывать руки персонала, кожу донора в месте пункции (пальца, локтевого сгиба), а также поверхность лабораторных столов только по мето­дикам, рекомендованным официальными документами;

    — растворы для дезинфекции необходимо использовать в свежем разве­дении в течение рабочего дня;

    — транспортировать кровь в закрытых пробирках и специальных кон­тейнерах с надежно закрытыми крышками;

    Посттрансфузионные гепатиты__________________________659

    — при работе с кровью (сывороткой) использовать резиновые груши или автоматические пипетки с одноразовыми наконечниками;

    — перемешивать кровь только в закрытых пробкой пробирках;

    — при попадании крови донора на руки (перчатки) или рабочее место немедленно обработать их 70 % этиловым спиртом или 1-3 % раствором хло­рамина, или другим разрешенным антисептиком в течение 2 мин, а поверх­ность столов — 2 раза с интервалом 15 мин;

    — кровь для исследований собирать в пробирку, на которой наклеена этикетка с указанием даты взятия крови, фамилии, инициалов обследуемого, и доставлять в лабораторию вместе с документами донора (списки, донор­ские карточки).

    Тщательная маркировка гемоконтейнеров, пробирок-спутников необходима для изъятия забракованной крови и проведения расследования в случае воз­никновения гепатита у донора и/или реципиента.

    15.2.4.2. Лабораторное исследование маркеров вирусных гепатитов

    Здесь не приводится детальное описание методик исследований, исполь­зуемых для детекции маркеров гепатитов, необходимых при обработке донор­ской крови, поскольку каждое исследование должно быть выполнено в соот­ветствии с инструкциями производителя, прилагаемыми к используемым диагностикумам и оснащению.

    Непременным условием является то, чтобы все оборудование, используе­мое для исследований, было тщательно калибровано (например, погрешность автоматических пипеток не должна превышать 5 %) и верифицировано при введении в эксплуатацию и после ремонта, должны быть тщательно соблюде­ны инструкции по работе с диагностическими тест-системами, условия их хра­нения, сроки годности.

    Общие требования к обследованию донорской крови. Обязательным является определение в крови доноров двух специфических маркеров вирус­ных гепатитов: поверхностного антигена вируса гепатита В (HBsAg) и ан­тител к вирусу гепатита С (анти-ВГС), одного суррогатного — активности аланинаминотрансферазы, а также антител к ВИЧ-1/2 и бледной трепоне-ме.

    Исследование маркеров гемотрансмиссивных инфекций должно прово­диться в лаборатории, имеющей соответствующую лицензию.

    При выборе диагностикумов (тест-систем) для обследования доноров следует:

    — использовать только реагенты и оборудование, сертифицированные для обследования крови доноров; необходимо придерживаться самой последней инструкции производителя;

    660 _______Глава 15. Гемотрансмиссивные инфекции и их профилактика

    — выбирать наиболее чувствительные тест-системы, позволяющие мини­мизировать количество ложноположительных (необоснованный отвод от до­норства) и ложноотрицательных (риск заражения реципиента) результатов;

    — по возможности поддерживать прямой контакт лаборатории и произ­водителя тест-систем для обеспечения качества работы оборудования и пер­сонала, а также для контроля «холодовои цепи» при транспортировке тест-систем. Это положение особенно актуально для России, поскольку, по дан­ным И. А. Ольховского и соавт. (1999), в практических лабораториях отда­ленных регионов параметры чувствительности и специфичности некоторых тест-систем существенно отличаются от значений, указанных в паспорте. Оче­видно, что в такой ситуации следует отдавать предпочтение диагностикумам с высокой устойчивостью к воздействию экстремальных температур;

    — обратить внимание на требования к образцу крови для исследования: объем пробы, маркировка, наличие и свойства антикоагулянта, срок заготов­ки образца, допустимые периоды и условия его хранения, другие параметры;

    — проверить свойства требуемых контрольных образцов и способ их ис­пользования. Если контрольные образцы поставляются производителем ли­цензированного теста, они должны использоваться именно с этим тестом;

    — проводить исследования с тщательно маркированным образцом от настоящей (последней) донации. При каждой донации, компоненты крови которой предназначены для аллогенного использования, должен быть выпол­нен весь комплекс исследований;

    — записывать результаты каждого исследования сразу же после просмот­ра; оценка результатов исследования производится лишь после его полного завершения. Документы по учету доноров и движению компонентов крови должны позволять отследить место нахождения любой дозы крови и каждо­го компонента из каждой дозы. Запись донорских доз и сведения о реципи­ентах должны позволять провести расследование побочных реакций, развив­шихся у реципиента. Предшествующие информационные материалы о доно­ре не исключают необходимости обследования донации для аллогенного ис­пользования.

    Срок годности результатов исследования — 10 дней.
    1   ...   63   64   65   66   67   68   69   70   ...   77


    написать администратору сайта