ОТВЕТЫ НА ПРАКТИКУ. теория. Учебнометодическое пособие для студентов Кубанского государственного медицинского университета разработано под редакцией Романцова Виктора Викторовича
 Скачать 0.93 Mb.
|
|
Технология выполнения внутримышечной инъекции Цель – терапевтическая. Показания – назначение врача. Оснащение: лотки - 2 шт. (для шприцев, лекарства) на манипуляционном столике, непрокалываемый контейнер - 2 шт. (для утилизации шприца и игл), шприцы одноразовые, емкостью 5-10 мл, игла длиной 20 мм, сечением 0,4 -0,8 мм, кожный спиртовой антисептик или спирт 70%, стерильные ватные шарики, салфетки - 4 шт., перчатки, лекарственный препарат (обычно от 2 до 10 мл), емкости для дезинфекции ватных шариков, перчаток. Типичные места для проведения инъекции: верхненаружный квадрант ягодицы и средняя треть наружной поверхности бедра. Алгоритм действий: 1. Объяснить пациенту цель, ход предстоящей манипуляции, получить добровольное согласие. 2. Помочь пациенту занять удобное положение лёжа на животе. 3. Обработать руки на гигиеническом уровне, надеть перчатки и обработать шариком со спиртом, шарики сбросить в латок для отработанного материала. 4. Набрать лекарственное средство в шприц, вытеснить воздух так, чтобы осталась точная доза, уложить шприц в стерильный лоток или стерильную упаковку из-под шприца. 5. Определить место инъекции методом пальпации, убедиться, что нет болезненности. 6. Обработать место инъекции антисептиком, делая мазки в одном направлении, двукратно, сначала большую площадь (примерно, 10 X 10 см), затем только место инъекции. 7. Взять шприц в правую руку, придерживая канюлю иглы мизинцем, а цилиндр шприца с поршнем держать как «писчее перо», иглой вниз, под углом 90° по отношению к поверхности тела пациента. 8. Растянуть кожу в месте инъекции большим и указательным пальцами левой руки (у ребенка и старого человека собрать мышцу в складку). 9. Ввести иглу со шприцем, находящимся в правой руке, быстрым движением в мышцу (угол введения 90°) на 2/3 длины иглы. 10. Перенести левую руку на поршень и потянуть поршень на себя, убедиться, что игла не в сосуде. Ввести медленно лекарственное средство в мышцу. 11. Извлечь иглу, продолжая придерживать её за канюлю, а левой рукой прижать к месту инъекции ватный шарик (салфетку), смоченный кожным антисептиком. 12. Утилизировать ватный шарик (салфетку), и шприц с иглой в разных емкостях, промаркировать емкости. 13. Снять перчатки, вымыть руки на гигиеническом уровне. Перчатки в дезраствор. 15. Зафиксировать результат выполнения в медицинскую документацию. 16. При длительных курсах - через один час после инъекции применить грелку или сделать йодную сетку. Технология выполнения внутривенной (струйной) инъекции Цель – терапевтическая. Показания – назначение врача. Оснащение: нестерильные лотки - 1 шт. на манипуляционном столике, стерильный пинцет анатомический (со стерильным материалом), непрокалываемый контейнер. (для утилизации игл и шприцев), шприцы однократного применения, емкостью 10-20 мл, игла длиной 20 мм, сечением 0,4-0,8 мм, кожный спиртовой антисептик или спирт 70%, ватные шарики (сколько нужно) или салфетка, перчатки, маска, лекарственный препарат (обычно от 10 до 50 мл), подушечка клеенчатая (валик), емкости утилизации и дезинфекции ватных шариков, салфеток, перчаток. Дезинфицирующие растворы, жгут венозный или кровоостанавливающий жгут ЖВ-01, перфорированный лейкопластырь для фиксации ватного шарика после венепункции. Типичные места для проведения инъекции: вена локтевого сгиба, кисти, запястья, стопы, височная область (у детей), а также центральные вены. Температура вводимого внутривенно раствора должна поддерживаться в пределах 37-38 °С. Во время процедуры постоянно контролировать состояние пациента. Алгоритм действий: 1. Объяснить пациенту цель, ход предстоящей манипуляции, получить добровольное согласие. 2. Помочь пациенту занять удобное положение лёжа. 3. Обработать руки на гигиеническом уровне, надеть перчатки и обработать шариком со спиртом, шарики сбросить в латок для отработанного материала. 4. Набрать лекарственное средство в шприц, вытеснить воздух так, чтобы осталась точная доза, уложить шприц в стерильный лоток или стерильную упаковку из-под шприца. 5. Определить место инъекции методом пальпации, убедиться, что нет болезненности. 6. Выбрать и осмотреть вену в локтевой ямке, подложить под локоть клеенчатую подушечку, помочь максимально разогнуть руку в локтевом суставе. 7. Наложить резиновый жгут (на рубашку или салфетку,) в средней трети плеча. Завязать жгут так, чтобы его свободные концы были направлены вверх, а петля вниз. 8. Проверить пульс на лучевой (ближайшей) артерии, убедится в его наличии. 9. Попросить пациента несколько раз сжать и разжать кисть, одновременно обработать область венепункции ватным шариком, смоченным антисептиком, делая мазки в одном направлении, двукратно, сначала большую площадь (примерно, 10x10 см), затем только место инъекции, поместить шарики в емкость для утилизации. 10. Взять шприц в правую руку, придерживая канюлю иглы (а не острие) указательным пальцем, а цилиндр шприца с поршнем охватить остальными пальцами сверху, срезом иглы вверх. 11. Проконтролировать наличие воздуха в шприце, при необходимости выпустить (если в шприце много пузырьков, встряхнуть его, и мелкие пузырьки сольются в один большой, который легко вытеснить через иглу над лотком, но не в воздух). 12. Зафиксировать вену большим пальцем левой руки. 13. Пунктировать вену, при этом ощущается «попадание в пустоту», затем продвинуть иглу, осторожно, по ходу вены не более чем на 1/2 длины иглы, почти параллельно коже, левой рукой оттянуть поршень на себя, увидеть появление крови в цилиндре шприца. 14. Снять осторожно жгут левой рукой, потянув за один из свободных концов, отходящих вверх, попросить пациента разжать кисть. 15. Ввести медленно лекарственное средство в вену, не меняя положение шприца, левой рукой нажимать на поршень и медленно вводить лекарственный раствор, оставив в шприце 1-2 мл. 16. Прижать к месту инъекции ватный шарик (салфетку) с кожным антисептиком левой рукой, извлечь иглу; попросить пациента согнуть руку в локтевом суставе (можно зафиксировать шарик перфорированным лейкопластырем). 17. Утилизировать ватный шарик (салфетку) и шприц с иглой в разных емкостях, промаркировать емкости. 18. Снять перчатки, вымыть руки на гигиеническом уровне. Перчатки в дезраствор. 19. Зафиксировать результат выполнения в медицинскую документацию. 32. Проведение бензидиновой и фенолфталеиновой проб. Технология постановки амидопириновой пробы Цель: провести комплексный контроль качества предстерилизационной очистки инструментов медицинского назначения (от гемоглобина) оценить эффективность работы моечных машин в ЦСО Оснащение: растворы для реактива 3% раствор перекиси водорода, 30% раствор уксусной кислоты, 3% спиртовой раствор амидопирина; отдельные пипетки, имеющие маркировку, мензурка с маркировкой “реактив”, лоток с ватными тампонами, лоток c сухим инструментарием для пробы; документация - журнал для постановки проб на качество предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения (журнал по форме N366/у); перчатки, маска, мыло, полотенца, кожный антисептик Алгоритм действий медсестры 1. Обработать руки на гигиеническом уровне. 2. Надеть маску, перчатки. 3. Приготовить реактив, смешать в равных количествах 3% раствор перекиси водорода, 30% уксусной кислоты, 5% спиртовой раствор амидопирина разными промаркированными пипетками 4. Нанести бесцветный реактив пипеткой «для реактива» на сухие предметы, прошедшие предстерилизационную очистку, на корпус и в полость инструмента, в просвет иглы и т.д. 5. Держать предмет над ватой или салфеткой, наблюдая за цветом стекающего реактива. 6. Оценить результат, при отрицательной пробе цвет реактива не изменится. 7. Читать реакцию в течении одной минуты: * Проба считается положительной если цвет реактива изменится на сине-фиолетовый. Это свидетельствует о наличии скрытой крови на предметах * Бурое окрашивание свидетельствует о наличии хлорсодержащих окислителей, ржавчины * Розовое окрашивание свидетельствует о наличии моющего средства со щелочной реакцией. 8. Провести ополаскивание и предстерилизационную использованного для пробы инструмента (при отрицательной пробе) 9. Снять перчатки, маску. Обработать руки на гигиеническом уровне. Сделать отметку в журнале контроля качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения. Технология постановки фенолфталеиновой пробы Цель: провести комплексный контроль качества предстерилизационной очистки инструментов медицинского назначения (остатки моющего средства) Оснащение: реактив 1% спиртовой раствор фенолфталеина; пипетка для реактива; лоток с ватными тампонами, лоток c сухим инструментарием для пробы; документация - журнал для постановки проб на качество предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения (журнал по форме N366/у); перчатки, маска, мыло, полотенца, кожный антисептик Обязательные условия: пробу необходимо ставить при температуре окружающей среды от +18 до +25, при pH 8,5 и более проба не ставится Алгоритм действия медсестры 1. Обработать руки на гигиеническом уровне 2. Надеть маску, перчатки 3. Нанести 1% спиртовой раствор фенолфталеина на корпус инструментария, в просвет иглы и т.д. 4. Держать иглу над ватой, наблюдая за цветом стекающего реактива 5. Оценить результат, при отрицательной пробе цвет реактив не меняется 6. Читать инструкцию в течении минуты. * Проба считается положительной, если цвет реактива изменится от розового до малинового, это свидетельствует о наличии на предметах моющего средства со щелочной реакцией 7. Оценить результат, при отрицательной пробе цвет реактива не изменится 8. Провести ополаскивание и предстерилизационную использованного для пробы инструмента (при отрицательной пробе ) 9. Снять перчатки, маску. Обработать руки на гигиеническом уровне. Сделать отметку в журнале контроля качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения Технология постановки азопирамовой пробы Цель: провести комплексный контроль качества предстерилизационной очистки инструментов медицинского назначения (от гемоглобина, моющих средств, хлорсодержащих, ржавчины, лекарственных средств) оценить эффективность работы моечных машин в ЦСО Обязательные условия: использование свежеприготовленного 1% р-ра азопирама в течении 2-х часов, соблюдение сроков хранения азопирама: хранить в плотно закрытой емкости при температуре окружающей среды от +18 до +25 Оснащение: азопирамовый реактив: 100 мл амидопирина, 1 мл соленокислого анилина смешать в сухой посуде и залить 96% спиртом до 1 л, перемешать до полного растворения всех ингридиентов; отдельные пипетки имеющие маркировку, мензурка с маркировкой “реактив” , лоток с ватными тампонами, лоток c сухим инструментарием для пробы; документация - журнал для постановки проб на качество предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения (журнал по форме N366/у) ;перчатки, маска, мыло, полотенца, кожный антисептик Алгоритм действий медсестры 1. Обработать руки на гигиеническом уровне. 2. Надеть маску, перчатки. 3. Приготовить 1% рабочий раствор азопирама: смешав в равных количествах раствор азопирама и 3% раствор перекиси водорода, разными промаркированными пипетками. 4. Нанести бесцветный реактив пипеткой «для реактива» на сухие предметы, прошедшие предстерилизационную очистку, на корпус и в полость инструмента, в просвет иглы и т.д. 5. Держать предмет над ватой или салфеткой, наблюдая за цветом стекающего реактива. 6. Оценить результат, при отрицательной пробе цвет реактива не изменится. 7. Читать реакцию в течении одной минуты: • Проба считается положительной если цвет реактива изменится на сине-фиолетовый. Это свидетельствует о наличии скрытой крови на предметах • Бурое окрашивание свидетельствует о наличии хлорсодержащих окислителей, ржавчины • Розовое окрашивание свидетельствует о наличии моющего средства со щелочной реакцией 8. Провести ополаскивание и предстерилизационную использованного для пробы инструмента ( при отрицательной пробе ) 9. Снять перчатки, маску. Обработать руки на гигиеническом уровне. Сделать отметку в журнале контроля качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения Технология постановки бензидиновой пробы Цель: провести комплексный контроль качества предстерилизационной очистки инструментов медицинского назначения (от гемоглобина) оценить эффективность работы моечных машин в ЦСО Оснащение: Для постановки бензидиновой пробы предварительно, но не ранее чем за 2 часа, готовят реактив: несколько кристаллов бензидина, 2 мл 50% уксусной кислоты и 2 мл 3% раствора перекиси водорода, отдельные пипетки имеющие маркировку, мензурка с маркировкой “реактив”, лоток с ватными тампонами, лоток c сухим инструментарием для пробы; документация - журнал для постановки проб на качество предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения (журнал по форме N366/у); перчатки, маска, мыло, полотенца, кожный антисептик Алгоритм действий медсестры: 1. Обработать руки на гигиеническом уровне 2. Надеть маску, перчатки 3. Предварительно, но не ранее чем за 2 часа, готовят реактив: несколько кристаллов бензидина, 2 мл 50% уксусной кислоты и 2 мл 3% раствора перекиси водорода. 4. Нанести розоватый реактив пипеткой «для реактива» на сухие предметы, прошедшие предстерилизационную очистку, на корпус и в полость инструмента, в просвет иглы и т.д. 5. Держать предмет над ватой или салфеткой, наблюдая за цветом стекающего реактива 6. Оценить результат, при отрицательной пробе цвет реактива не изменится 7. Читать реакцию в течении одной минуты * Проба считается положительной если цвет реактива изменится на сине-зелёный (зелёный). Это свидетельствует о наличии скрытой крови на предметах. 8. Провести ополаскивание и предстерилизационную использованного для пробы инструмента (при отрицательной пробе) 9. Снять перчатки, маску. Обработать руки на гигиеническом уровне. Сделать отметку в журнале контроля качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения. 33. Сбор мокроты для исследования на: общий анализ, микобактерии туберкулеза и атипические клетки. Обучение пациента подготовке к сбору мокроты для исследования на БК методом флотации Для исследования на микобактерии туберкулеза мокроту собирают в чистую емкость в течение суток, а при необходимости (малое количество мокроты) в течение 3 суток, сохраняя ее в прохладном месте. Так при сборе мокроты для исследования на микобактерии туберкулеза необходимо иметь в виду, что они обнаруживаются только в том случае, если их содержание в 1 мл мокроты составляет не менее 10000. Поэтому при сборе мокроты ее накапливают в течение 1 -3 суток и доставляют в клиническую лабораторию в количестве не менее 15-20 мл. Примечание. Бактериоскопия проводится троекратно. Цель: обеспечить качественный сбор мокроты, содержащей достаточное количество микобактерий туберкулеза, если они выделяются. Оснащение: карманная плевательница для сбора мокроты или чистая, стеклянная широкогорлая банка из темного стекла с крышкой, направление в лабораторию. Алгоритм действий: 1 Предупредить и объяснить пациенту смысл и необходимость предстоящего исследования. 2. Объяснить, что необходимо, в течение 3 дней подряд собирать мокроту для исследования в емкость из темного стекла. 3. Обеспечить направлением. 4. Обучить технике сбора мокроты: предупредить, что собирают мокроту только при кашле, а не при отхаркивании. 5. Объяснить, что необходимо соблюдать правила личной гигиены до и после сбора мокроты. 6. Объяснить, что вечером необходимо почистить зубы, а утром прополоскать рот и глотку кипяченой водой непосредственно перед сбором. 7. Пациенту следует - Утром откашлять и собрать мокроту в чистую банку в количестве не менее 15-20 мл. Закрыть крышку. 8. Прикрепить направление и доставить банку в клиническую лабораторию. Обучение пациента подготовке к сбору мокроты для исследования на АК — атипичные клетки При взятии мокроты на атипичные (опухолевые) клетки следует помнить, что эти клетки быстро разрушаются, поэтому исследуют свежевыделенную мокроту. Для большей вероятности попадания опухолевых клеток в мокроту иногда применяют предварительные ингаляции с протеолитическим ферментом трипсином, способствующим выхождению мокроты из наиболее глубоких отделов бронхиального дерева. Оснащение: чистая стеклянная широкогорлая банка из прозрачного стекла, направление, дезраствор: 5% раствор хлорамина, 2% раствор бикарбоната натрия. Алгоритм действий: 1. Предупредить пациента и объяснить ему смысл и необходимость предстоящего исследования. 2. Обеспечить лабораторной посудой, направлением. 3. Обучить технике сбора мокроты. Предупредить, что собирают мокроту только при кашле, а не при отхаркивании. 4. Объяснить, что необходимо почистить зубы утром за 2 часа до сбора мокроты и прополоскать рот и глотку кипяченой водой непосредственно перед сбором. 5. Пациенту следует - Откашлять и собрать мокроту в чистую банку в количестве не менее 3-5 мл. Закрыть крышку. 6. Прикрепить направление и доставить в клиническую лабораторию как можно скорее. |